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DiO是一種親脂性的熒光染料,可以用來染細胞膜和其它脂溶性生物結構進入細胞膜后,DiO在整個細胞膜上擴散,最佳濃度時可以使整個細胞膜染色。DiO在進入細胞膜之前熒光非常弱,當與細胞膜結合后其熒光強度大大增強,DiO被激發后可以發出綠色的熒光,具有很高的淬滅常數和激發態壽命。可以用標準的 FITC濾光片檢測。
DiO通常不會明顯影響細胞的生存力(viability),因此被廣泛用于正向或逆向的,活的或固定的神經等細胞或組織的示蹤劑或長期示蹤劑(long-term tracer)。除了最簡單的細胞膜熒光標記外,還可以用于檢測細胞的融合和粘附,檢測發育或移植過程中細胞遷移,通過FRAP(Fluorescence Recovery After Photobleaching)檢測脂在細胞膜上的擴散,標記脂蛋白等。下面和瑞禧生物小編一起來看看一種細胞膜綠色熒光探針的操作步驟:
染色液制備:
配置DMSO或EtOH 儲存液:儲存液用 DMSO或EtOH配置濃度1~5 mM。
注意:未使用的儲存液保存在-20℃,分裝保存,避免反復凍融。
工作液制備:用合適的緩沖液(如:無血清培養基,HBSS或PBS)稀釋儲存液,配制濃度為1~5 μM的工作液。
注意:工作液最終濃度是根據不同細胞和實驗的經驗來配制。可從推薦濃度的十倍以上找最佳條件。
懸浮細胞染色:
懸浮細胞密度為 1 × 106/mL加入到工作液中。
在37 ℃培養細胞 2~20分鐘,不同的細胞最佳培養時間不同。
染色細胞試管在1000~1500轉離心5分鐘。
傾倒上清液,再次緩慢加入預溫37℃的培養液。
粘壁細胞的染色:
使粘壁的細胞在無菌實驗室培養。
從培養基中移走蓋玻片,吸走過量培養液,將蓋玻片放在潮濕的環境中。
在蓋玻片的一角加入100μL的染料工作液,輕輕晃動使染料均勻覆蓋所有細胞。
在37 ℃培養細胞 2~20分鐘,不同的細胞最佳培養時間不同。
吸干染料工作液,用培養液洗蓋玻片2~3次,每次用預溫的培養基覆蓋所有細胞,培養5~10分鐘,然后吸干培養基。
顯微鏡檢測:
DiD,DiO,DiI,DiR和DiS濾光器的選擇。
多色染料的同時檢測,濾光器按照以下設定:
a) DiI和DiO=Omega XF52,Chroma 51004;
b) DiI和DiD=Omega XF92,Chroma 51007;
c) DiI,DiO和DiD=Omega XF93,Chroma 61005
流式細胞儀檢測:
染色的細胞可以分別用經典的FL1,FL2,FL3和FL4流式細胞儀檢測。
序號 | 新聞標題 | 瀏覽次數 | 作者 | 發布時間 |
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